Биологические науки № 3, 1987
ВЛИЯНИЕ АУТОЛОГИЧНОИ КРОВИ В СОСТОЯНИИ ГИПООСМОСА НА ИММУННУЮ СИСТЕМУ ОРГАНИЗМА
Р. Н. Ходанова, Л. С. Сеславина, Н. Н. Голубева, В. В. Мальцева, В. А. Зуява, О. Н. Кутькова
Проведен анализ иммунного статуса у больных нейродермитом в ответ на лечение аутологичнои кровью. Установлено, что достигаемый терапевтический эффект коррелирует с рядом иммунологических показателей; повышается содержание лизоцима в сыворотке крови и в слюне, увеличивается метаболическая активность нейтрофилов, несколько возрастает количество Т-лимфоцитов, восстанавливается баланс субпопуляций Т-лимфоцитов.
The analysis of the ummune status of patients under neurodermite after autologic blood treatment has been performed. It has been found that positive therapeutic effect correlates with a number of immunologic parameters: the lysozyme content raises, the metabolic activity of neutrophilic cells increases, a number of T-lymphocytes grows to a certain degree, the balance of T-lymphocyte subpopulation normalizes.
Иммунная система играет важную роль в обеспечении гомеостаза организма. Достижения иммунологии последних лет в исследовании эндогенных биологически активных веществ, интерлейкинов и лимфокинов, вновь возродили интерес к действию на организм аутологичнои крови и ее компонентов. Существенно, что в ряде случаев дополнительная обработка крови обеспечивает усиление вызываемого ею иммунокоррегирующего эффекта. Так, Е. Г. Кирдей и соавторы [2] показали, что разрушение эритроцитов и гранулоцитов способствует формированию клеточного иммунного ответа, усиливая реакцию гиперчувствительности замедленного типа и цитотоксическую активность лимфоцитов. При использовании цельной крови стимулирующий эффект достигается предварительным нагреванием ее до 38—40 °С [8]. Выраженное терапевтическое действие коррелирует с изменением иммунологических характеристик при ультрафиолетовом облучении собственной крови [4, 6]. Авторы предполагают, что для стимуляции иммунного ответа могут иметь значение структурно-функциональные перестройки поверхности иммунокомпетентных клеток, приводящие к обнажению рецепторов. Нельзя, видимо, также умалять роль клеточных компонентов и веществ, образующихся в результате модификации мембраны клетки и обогащающих жидкую фракцию крови. Необходимость изучения этих явлений и механизмов очевидна.
22
Биологические науки № 3, 1987
Мы исследовали кинетику некоторых иммунологических показателей у пациентов, страдающих нейродермитом, в ответ на лечение их аутологичной кровью по методу Р. Н. Ходановой [7], которое предусматривает внутрикожные инъекции аутокрови, находящейся в состоянии гипоосмоса. Полученные данные описаны в настоящей статье.
Были обследованы 26 человек до лечения, в процессе лечения (14-дневный курс) и спустя 1,5—2 месяца после проведенной терапии. Результаты обработаны статистически.
Для оценки иммунного статуса больных проводили количественный учет Т- и В-лимфоцитов (Е-РОК и ЕАС-РОК соответственно), а также теофиллинустойчивой (ТФУ) и теофиллинчувствительной (ТФЧ) субпопуляций Т-клеток [12]. Энергетическое состояние лимфоцитов оценивали цитохимическим методом Р. Н. Нарциссова [5], определяя активность митохондриальных дегидрогеназ с сукцинатом и «-глицерофосфатом в качестве субстратов. Секреторную функцию иммунной системы определяли по содержанию в сыворотке крови иммуноглобулинов А, М, G. Кроме того, исследовали фагоцитарную активность нейтрофилов (ФАН) по отношению к убитому стафилококку и активность окислительно-восстановительных ферментов в этих клетках в тестах с нитросиним тетразолием (НСТ) [3, 10, 11]. Под влиянием дегидрогеназной системы нейтрофила бесцветный НСТ восстанавливается в темно-фиолетовые гранулы формазана. Сравнительное изучение этой реакции в интактных клетках (спонтанный НСТ-тест) и предварительно стимулированных пирогеналом (активированный НСТ-тест) позволяет судить о потенциальных ресурсах системы фагоцитоза. В сыворотке и слюне определяли содержание лизоцима, активность которого имеет значение в иммунологической реактивности организма [1, 9].
В результате исследования иммунологического статуса у больных нейродермитом, прошедших курс лечения описанным методом, получены следующие данные (табл.). Средние величины содержания Т- и В-лимфоцитов в крови перед началом лечения в основном укладывались в норму (58±2 и 10±1 % соответственно), но имели большой диапазон колебаний внутри группы (от 40 до 78 % для Т-лимфоцитов и от 4 до 24 % Для В-лимфоцитов). В то же время количественный анализ субпопуляций Т-лимфоцитов выявил выраженную разницу между здоровыми и больными людьми: у больных содержание ТФУ-клеток было достоверно более высоким. Около 70 % больных до лечения имели индекс
Динамика показателей состояния иммунитета у больных нейродермитом в процессе лечения по сравнению с нормой
Показатели , |
До лечения |
В процессе лечения |
Через 2 месяца после лечения |
В норме |
Число лейкоцитов, тыс. кл/мм3 |
6,0±0,4 |
5,0±0,4 |
5,6±0,9 |
6,2+0,6 |
Количество лимфоцитов, % |
34±2 |
33±4 |
34±2 |
33,0+0,3 |
Е-РОК |
|
|
|
|
% |
58±2 |
64±3 |
59±2 |
66+2 |
абс. |
1,1±0,2 |
1,2±0,2 |
1,0±0,1 |
|
ЕАС-РОК |
|
|
|
|
% |
10±1 |
12±0,5 |
П,1±0,6 |
13±1 |
абс. |
0,2±0,1 |
0,2±0 |
0,1±0 |
|
ТФУ, % |
44±3 |
56±5 |
43±2 |
|
ТФЧ, % |
13,7 |
5,8 |
18±2 |
|
ТФУ/ТФЧ |
3,2 |
9,8 |
2,4 |
2 |
Концентрация иммуноглобулинов |
|
|
|
|
в сыворотке |
|
|
|
|
А |
2,2±0,3 |
1,3±0,1 |
1,5±0,1 |
2,8±0,7 |
М |
1,0±0,1 |
1,0±0,2 |
0,8±0,1 |
1,0±0,1 |
G |
П,5±0,8 |
П,8±2,0 |
Ю,0±0,6 |
12,4±2,2 |
ФАН, % |
42±5 |
44±8 |
40±4 |
41±2 |
НСТ-тест |
|
|
|
|
спонтанный |
25±5 |
|
23±9 |
12±2 |
активированный |
35±4 |
|
42±9 |
зо±з |
Концентрация лизоцима, г/л в сыворотке крови в слюне |
9±2 81±18 |
17±6 140±32 |
8±2 127±14 |
9±1 122±15 |
Биологические науки № 3, 1987 23
ТФУ/ТФЧ выше 4 (в норме он равен 2), в отдельных случаях индекс ТФУ/ТФЧ составлял 7, 19 и даже 30.
Лечение приводило к некоторому возрастанию процентного содержания Т-лимфоцитов; его максимальное значение приходилось на конец курса, а затем наблюдалось снижение - до первоначальной величины. Действительно выраженные, "своеобразные и достоверные изменения были отмечены не в общем фонде Т-лимфоцитов, а среди их субпопуляций. Уже после первых дней лечения резко возрастало число ТФУ-кле-ток. После 8 суток лечения число ТФУ-клеток снижалось. В дальнейшем у всех больных прослеживалась тенденция к нормализации клеточного баланса исследованных субпопуляций. В результате лечения (спустя 1,5—2 месяца) содержание Т-лимфоцитов (в %) у больных было несколько выше, чем исходное, но абсолютное число Т-лимфоцитов не менялось. Колебания числа В-лимфоцитов не имели закономерного характера на протяжении всего периода наблюдения. Вместе с тем становилось практически нормальным соотношение субпопуляций Т-лимфоцитов (ТФУ/ТФЧ = 2,4), что явилось следствием сокращения пределов колебания числа ТФУ-клеток внутри обследованной группы: до лечения диапазон колебаний составлял 12—76%, после проведенного курса — 27—52 % -
При исследовании митохондриальных дегидрогеназ установлено, что у 60 % больных до лечения уровень активности сукцинатдегидроге-назы (СДГ) и а-глицерофосфатдегидрогеназы (а-ГФДГ) отвечал нормальным показателям, а соотношение активностей этих ферментов соответствовало норме у 40 % больных.
Примененное терапевтическое воздействие уже на 1—7-е сутки вызывало значительное снижение суммарной активности а-ГФДГ в лимфоцитах, что влекло за собой дисбаланс соотношения активностей изученных ферментов. В этот период нормальные показатели а-ГФДГ и физиологический баланс ферментов не были выявлены ни у одного больного. Отметим, что в эти же сроки среди лимфоцитов появилась большая популяция клеток, не активных в отношении а-ГФДГ (т. е. с крайне низким количеством гранул формазана), число которых к 10—14-м суткам по сравнению с нормой возросло с 9 до 25%. Спустя 1,5—2 месяца после проведенного курса лечения количественные характеристики изученных ферментов приближались к нормальным.
Из представленных данных следует, что примененное лечение оказывает значительное и быстрое влияние на обменные процессы в лимфоцитах. Аутологичная кровь в состоянии гипоосмоса, по-видимому, воздействует не только на активность ферментов. Принимая во внимание распределение популяции лимфоцитов по уровню а-ГФДГ в начальные сроки лечения (имеется в виду появление большого количества «неактивных» клеток), можно полагать, что она стимулирует выброс в кровяное русло клеток с иной метаболической характеристикой.
Об уровне секреторной функции иммунокомпетентных клеток судили по концентрации в сыворотке больных иммуноглобулинов А, М, G. До начала лечения этот показатель находился в пределах нормы, однако у большинства пациентов (77, 77 и 74 % для иммуноглобулинов А, М и G соответственно) располагался в интервале между средней величиной нормы и нижней ее границей. Проведенное лечение выраженного изменения этого иммунологического показателя не вызвало. Выявлена лишь некоторая тенденция к уменьшению концентрации иммуноглобулинов: возросло число больных с заметно заниженными и уменьшилось— с повышенными значениями; колебания уровня от средней величины до нижней ее границы стали составлять 100, 100 и 85 % для иммуноглобулинов А, М и G соответственно. Однако достоверными эти изменения оказались только для иммуноглобулина А.
В ходе исследования получены также данные, характеризующие реакцию неспецифического иммунитета организма. Оказалось, что число
24 Биологические науки № 3, 1987
фагоцитирующих нейтррфилов не отражает существа перестроек, происходящих в организме под действием лечения (процентное количество этих клеток у больных соответствовало таковому у здоровых и в процессе лечения не менялось). В то же время наглядными были тесты,, характеризующие метаболическую активность нейтрофилов, поскольку они указывали на нормализацию функционального состояния клеток. Так, несмотря на то что спонтанный НСТ-тест постоянно выявляет у больных нейродермитом повышенное «напряжение» клетки (26±5 при норме 12±2), возрастание разницы между спонтанным и активированным тестами НСТ (10±2 и 19±3) говорит от увеличении потенциальных возможностей микробоцидной системы нейтрофилов. Убедительным отражением положительных изменений в функции нейтрофилов и моноцитов в ответ на проведенное лечение служат также данные об изменениях содержания лизоцима в сыворотке и особенно в слюне.
Описанные результаты свидетельствуют о чрезвычайно быстрой реакции иммунной системы организма на примененное воздействие аутологичной кровью. Особенно наглядны в этом отношении цитохимические исследования, которые выявили быструю перестройку метаболизма лимфоцитов и нейтрофилов, а также данные о динамике субпопуляций Т-лимфоцитов. Достигаемый терапевтический эффект коррелировал с рядом иммунологических показателей, отражающих благоприятное действие примененного метода лечения нейродермита: повышалась концентрация лизоцима, увеличивалась активность нейтрофилов в сравнительном НСТ-тесте, несколько возрастало количество Т-лимфоцитов,. восстанавливался баланс субпопуляций Т-лимфоцитов. Вместе с тем у всех больных на протяжении первой недели лечения были отмечены и не имеющие пока убедительного объяснения парадоксальные изменения,, которые заключаются в появлении большого числа «неактивных» по а-ГФДГ Лимфоцитов и резком возрастании численности ТФУ-лимфоци-тов, что приводило к еще более выраженному дисбалансу субпопуляций. Известно, что теофиллин оказывает на мембраны Т-лимфоцитов двоякое действие — на части зрелых клеток он маскирует рецепторы к эритроцитам барана, а на незрелых Т-лимфоцитах он может вызывать их экспрессию. Это позволяет предполагать гетерогенность ТФУ-субпопуляции в случае резкого возрастания ее числа в первые дни лечения больных. Есть основание считать, что дополнительной к исходной популяции ТФУ-клеток на 4—8-е сутки лечения могут быть мигрирующие в кровяное русло незрелые лимфоциты, относящиеся, по-видимому, к субпопуляции предшественников Т-клеток. Выяснение путей индукции этих клеток, их дифференцировки и осуществления эффекторного действия — один из существенных моментов в изучении механизмов терапевтического действия примененного метода лечения.
Таким образом, при обследовании больных нейродермитом, леченных по методу Р. Н. Ходановой аутологичной кровью в условиях гипоосмоса, обнаружена быстрая и глубокая реакция различных звеньев иммунной системы организма. Как показал анализ, выявленные реакции имеют иммунокоррегирующую направленность.
Литература
1. Бухарин О. В., Васильев Н. В. Лизоцим и его роль в биологии и меди
цине. Томск, 1974.
2. Кирдей Е. Г., Нечаева В. И, и др. Влияние разрушенных эритроцитов и
гранулоцитов на формирование клеточного иммунного ответа. — Иммунология,
1985, № з, с. 76—78.
3. Климов В. В., К-ошовкина Т. В. Тест восстановления нитросинего тетра-
золия, стимулированного пирогеналом. — Лабораторное дело, 1982, № 10, с. 624—
626.
4. К р ы л е н к о в В. А., Кукуй Л. М. и др. Облученная ультрафиолетовым све
том кровь: фотохимия, иммунологическое действие. — Докл. АН СССР, 1983V
т. 270, № 1, с. 242—246. '
Биологические науки № 3, 1987 25
5. Н а р ц и с с о в Р. Н. Применение н-нитротетразоляя фиолетового для количественной цитохимии дегидрогеназ лимфоцитов человека. — Арх. патологии, 1969, № 5, с. 85—88.
"6. П о т а ш о в Л. В., Ч е м и н а в а Р. В. Ультрафиолетовое облучение собственной крови. — Вестн. хирургии, 1982, № 6, с. 130—134.
7. X о д а н о в а Р. Н. Способ лечения аллергических заболеваний. Авт. свидетель
ство СССР № 741877. — Бюл. изобрет., 1980, № 23.
8. Ш ахтм ейстер И. Я., Зудин Б. И. и др. Способ повышения иммунологиче
ской реактивности организма (его варианты). Авт. свидетельство СССР
№ 923550'. — Бюл. изобрет., 1982, № 16,
9. Barling P. M. et al. The isolation and characterization of lysozyme from human
fortal membranes comparison with the enzyme from other sources. — Сотр. Bioc-
hem. a. Physiol., 1985, B. 81. № 2, p. 509—511.
10. Lace J. K. et al. An appraisal of the nitroblue tetrazolium reduction test. — Amer.
Journ. Med., 1975, v. 58, p. 685—696.
11. Park В. Н. The use and limitations of the nitroblue tetrazolium test as a diagnos
tic acid. — Journ. Pediatr., 1971, v. 78, p. 376—378.
12. Shore A., et. al. Induction and separation of antigendependent T-helper and T-sup-
ressor cells in men. — Nature (London), 1978, v. 274, p. 586—587.
Рекомендована Институтом иммунологии Министерства здравоохранения СССР. Поступила 19 ноября 1986 г.